РОЛЬ СТАБИЛИЗАТОРОВ КОЛЛОИДНЫХ СИСТЕМ В ПРОЯВЛЕНИИ СТИМУЛИРУЮЩЕЙ АКТИВНОСТИ НАНОЧАСТИЦ ОКСИДА МЕДИ ПО ОТНОШЕНИЮ  К РАСТЕНИЯМ  ТОПОЛЯ В КУЛЬТУРЕ IN VITRO

Ольга Анатольевна Федорова,Татьяна Александровна Гродецкая,Надежда Александровна Евтушенко,Петр Михайлович Евлаков

ПРЕПРИНТ

Эта статья является препринтом и не была отрецензирована.
О результатах, изложенных в препринтах, не следует сообщать в СМИ как о проверенной информации.

РОЛЬ СТАБИЛИЗАТОРОВ КОЛЛОИДНЫХ СИСТЕМ В ПРОЯВЛЕНИИ СТИМУЛИРУЮЩЕЙ АКТИВНОСТИ НАНОЧАСТИЦ ОКСИДА МЕДИ ПО ОТНОШЕНИЮ К РАСТЕНИЯМ ТОПОЛЯ В КУЛЬТУРЕ IN VITRO

О. А. Федорова,

Т. А. Гродецкая,

Н. А. Евтушенко,

П. М. Евлаков

2025-01-16

https://doi.org/10.24108/preprints-3113349

Обсуждаются эффекты воздействия растворов наночастиц оксида меди, стабилизированных неионными поверхностно активными веществами (Твин 20 и Тритон Х100) и полигексаметиленбигуанидом (ПГМБ), на различные этапы клонального микроразмножения растений тополя ´Тополь белый × Ос.´ (Populus alba × Populus tremula) в культуре in vitro. Использование стабилизированных наночастиц в составе среды культивирования на этапе введения в культуру in vitro в концентрации 5 мг/л позволяет повысить выход стерильных жизнеспособных эксплантов на 16.7–26.7% по сравнению с контрольными растениями. На стадии мультипликации положительное действие нанопрепаратов отмечено по показателю коэффициента мультипликации. Максимальное значение данного показателя (3.3) получено для наночастиц 5 мг/л, стабилизированных ПГМБ (в контроле 2.6). Для стимуляции корнеобразования микропобегов тополя среды с добавлением наночастиц оксида меди, стабилизированных Тритоном и Твином, оказались оптимальными. Экспериментально подтверждено увеличение числа укорененных побегов на 10%, числа корней на побег до 46%.

Ссылка для цитирования:

Федорова О. А., Гродецкая Т. А., Евтушенко Н. А., Евлаков П. М. 2025. РОЛЬ СТАБИЛИЗАТОРОВ КОЛЛОИДНЫХ СИСТЕМ В ПРОЯВЛЕНИИ СТИМУЛИРУЮЩЕЙ АКТИВНОСТИ НАНОЧАСТИЦ ОКСИДА МЕДИ ПО ОТНОШЕНИЮ К РАСТЕНИЯМ ТОПОЛЯ В КУЛЬТУРЕ IN VITRO. PREPRINTS.RU. https://doi.org/10.24108/preprints-3113349

Список литературы

1. Monteuuis O. // Micropropagation and production of forest trees / Eds. Park Y.-S., Bonga J. M., Moon H.-K., Vegetative Propagation of Forest Trees/National Institute of Forest Science (NIFoS). Seoul, Korea. 2016, P. 32.

2. Singh Y., Kumar U., Panigrahi S. et al. // Plant Physiol. Bioch. 2023. V. 203. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2023.108004

3. Kim D.H., Gopal J., Sivanesan I. // RSC Adv. 2017. V. 7. P. 36492. https://doi.org/10.1039/C7RA07025J

4. Álvarez S.P., Tapia M.A.M., Vega M.E.G. et al. // Nanotechnology and Plant Tissue Culture / In: Prasad, R. (eds) Plant Nanobionics. Nanotechnology in the Life Sciences. Springer, Cham. 2019. P. 333. https://doi.org/10.1007/978-3-030-12496-0_12

5. Hayat S., Pichtel J., Faizan M., Fariduddin Q. // Sustainable Agriculture Reviews 41: Nanotechnology for Plant Growth and Development. Springer Nature Switzerland AG. 2020. 216 p.

6. Tung H.T., Bao H.G., Buu N.Q., et al. The use of silver nanoparticles as a disinfectant and media additive in plant micropropagation / Eds. Nhut, D.T., Tung, H.T., Yeung, E.CT. Plant Tissue Culture: New Techniques and Application in Horticultural Species of Tropical Region : Springer: Singapore, 2022. DOI: 10.1007/978-981-16-6498-4_14

7. Aleksandrowicz-Trzcinska M., Szaniawski A., Studnicki M., et al. // Forest. 2018. V. 11. P. 690-697. DOI: 10.3832/ifor2855-01.).

8. Bello-Bello J.J., Chávez-Santoscoy R.A., Lecona-Guzman C.A., et al.// Dose-Response. 2017. V.15. P. 1-9. doi: 10.1177/1559325817744945

9. Helaly M., El-Metwally M., El-Hoseiny H., et al. // Aust. J. Crop Sci. 2014. V.8. No.4. P.612-624.

10. Bao H. G., Tung H. T., Van H. T. et al. // Plant Cell Tiss. Org. 2022. V. 151. No. 2. P. 385-399.

11. Iqbal Z., Javad S., Naz S. et al. // Front. Plant Sci. 2022. V. 13. P. 1-10.

12. Ahmad M. A., Javed R., Adeel M, et al // Molecules. 2020. V.25. https://doi.org/10.3390/molecules25061356

13. Grodetskaya T. A., Evlakov P. M., Fedorova O. A., et al. // Nanomaterials. – 2022. V. 12. No. 5. P. 864.

14. Murashige T., Skoog F. //Physiologia Plantarum. 1962. Vol. 15. P. 73 – 497.

15. Liu J., Tu L., Cheng M. et al. // J Drug Deliv. Sci. Technol. 2020. V. 56. DOI:10.1016/j.jddst.2020.101607

16. M. Krstić, Đ. Medarević, J. Đuriš, et al. // Lipid Nanocarriers for Drug Targeting / Eds. William Andrew Publishing, Norwich NY. 2018. P. 473-508.

17. Murashige T. // Annu. Rev. Plant Physiol. 1974. V.25. P.135–166

18. Falk N.A. // J. Surfactants Deterg. 2019 V. 22. No.5. P.1119-1127. doi: 10.1002/jsde.12293.

19. Полищук С. Д., Чурилов Г. И. , Чурилов Д. Г. др. // Вестник РГАТУ. 2019. №4 (44). С. 45-53. DOI 10.36508/RSATU.2019.32.87.008

20. Churilov G., Ngo Q.B., Nguyen H. C. Physiological and Biochemical Effects of Nanocrystalline Metals on maize plant // Proceeding of 4th International Workshop on Advanced Materials and NanoScience, 2013. Nov 12-14. РР. 282 – 285

21. Bannoud F., Bellini C. // Front. Plant Sci. 2021. V. 12. P. 1-22. https://doi.org/10.3389/fpls.2021.668837

ПРЕПРИНТ

ИНФОРМАЦИЯ